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    Real-time PCR實驗攻略(基本方法二)

    發(fā)布時間: 2022-03-11  點擊次數(shù): 2922次

    材料與儀器

     

    一、關(guān)于Trizol Reagent需要的試劑
     
    1. Chloroform:氯仿 (分析純)
     
    2. Isoproplyl alcohol:異丙醇(分析純)
     
    3. 75% Ethanol(in DEPC-treated water):75%乙醇。要求用分析純無水乙醇并用0.01%的DEPC處理過的無Rnase的水稀釋。
     
    4. RNase-free water:無Rnase的水。方法是:將DEPC按0.01%(V/V)加在dH2O中500 ml(50 ul),在37 ℃過夜,并高壓滅菌即得(150 ℃ 3小時)
     
    5. 一次性塑料手套
     
    6. 注意:DEPC有致癌之嫌
     
    7. 抽提出的細(xì)胞總RNA干燥后加水50 ul,取10 ul加無Rnase水990 ul,稀釋100倍成1 ml。于0.5 cm厚的石英比色杯中,以無Rnase水為對照,在721型紫外分光光度計下檢測,結(jié)果應(yīng)為:A260/280 ratio <1.6。
     
    8. 分離組織10 mg(純組織)加800 ul Trizol試劑。

     

     

    步驟

     

    二、DEPC處理方法如下

     

    1. DEPC處理

    (1)DEPC水:100 ml超純水加入0.2 ml DEPC,充分混勻,高壓滅菌。

    (2) Tip頭(槍頭). EP管等在提RNA過程中及做RT時接觸RNA的器材(包括1 ml. 200 μl. 20 μl Tip頭;EP管和PCR反應(yīng)管等):用0.1%的DEPC水(1000 ml超純水加入1ml DEPC)37 ℃浸泡過夜,高壓滅菌。

     

    2. 提取RNA,用DEPC水溶解

     

    3. RT 我是用PCR儀來控制溫度和時間的,所以RT是在PCR反應(yīng)管中作的。

     

    4. 操作過程中要戴一次性手套,并經(jīng)常換手套。 最好把要直接接觸樣品的東西都用DEPC水處理一下,槍頭盒插好槍頭后,加入1-2 ml的0.1%DEPC水,再滅菌就行了;現(xiàn)在有進口的RNASE FREE的槍頭買,直接用不用處理的。
    三、如何消除污染
     
    機器運行完后,取出PCR產(chǎn)物時不能隨便丟棄,應(yīng)該用塑料手套或其他打結(jié)包好后丟入垃圾桶。
     
    (1) 試劑:mixer盡量分裝,不要原瓶多次取用。
     
    (2) 加樣:原則是DNA最后加,其他試劑按照體積大小從大往小的加。如果是同種引物和探針有多管的話只是DNA不同,那么采取的方法是算出總體積后加在一個管子里面,混合均勻之后再分裝到各個管子里去,這樣可以有效地避免誤差及污染。 另外,普通實驗室容易污染,且污染程度很高,與跑電泳還有質(zhì)粒制備提取都在同一個房間里有比較大的關(guān)系,最容易造成高濃度污染的就是產(chǎn)物的開蓋和質(zhì)粒的稀釋。 目前,國內(nèi)外各個公司提供的診斷試劑盒大多采用了UNG來防污染。Uracil-DNA N-glycosylase(UNG)尿嘧啶DNA糖基酶,來源于大腸桿菌重組克隆表達。
     
    四、RNA定量
     
    RNA也最好至少要用電泳,一方面定量,另一方面可以看看完整性。至于用分光光度計比較不同標(biāo)本之間就更不準(zhǔn)了。 RNA的貯藏,最主要的是溫度,-20不夠,最好-80,液氮最保險 mRNA是不能代替蛋白水平的分析的,因為還有翻譯效率和RNA降解速度的影響。
     
    五、RT-PCR有兩種做法
     
    條件具備的話可用kit進行一步法進行;若條件不太好的話可分兩步進行逆轉(zhuǎn)錄再PCR。但后來發(fā)現(xiàn)兩步法的結(jié)果更加理想,條帶特異性強且無拖尾現(xiàn)象,我推測是體系更加單一比較利于PCR的進行 一定要做內(nèi)參的,每一次,我想。不作內(nèi)參的結(jié)果是不可信的 電泳可以不一起跑,沒有關(guān)系,計算的是相對表達程度,半定量和定量RT-PCR做的都是基因相對表達量,不是絕對表達量。
     
    六、mRNA的分離與純化
     
    步驟(4)中將RNA溶液置65 ℃中溫育然后冷卻至室溫再上樣的目的有兩個,一個是破壞RNA的二級結(jié)構(gòu),尤其是mRNA Poly(A+)尾處的二級結(jié)構(gòu),使Poly(A+)尾充分暴露,從而提高Poly(A+)RNA的回收率;另一個目的是能解離mRNA與rRNA的結(jié)合,否則會導(dǎo)致rRNA的污染。所以此步驟不能省略。
     
    七、下面,我們介紹一個可以確認(rèn)RNA溶液中有沒有殘留的RNA酶的方法:
     
    保溫試驗方法很簡單的,按照樣品濃度,從RNA溶液中吸取兩份1 000 ng的RNA加入至0.5 ml的離心管中,并且用pH7.0的Tris緩沖液補充到10 ul的總體積,然后密閉管蓋。把其中一份放入70 ℃的恒溫水浴中,保溫1 h。另一份放置在-20 ℃冰箱中保存1 h。 時間到了之后,取出兩份樣本進行電泳。電泳完成后,比較兩者的電泳條帶。如果兩者的條帶一致或者無明顯差別(當(dāng)然,它們的條帶也要符合方法2中的條件), 則說明RNA溶液中沒有殘留的RNA酶污染,RNA的質(zhì)量很好。相反的,如果70 ℃保溫的樣本有明顯的降解,則說明RNA溶液中有RNA酶污染。
     
    八、PCR污染與對策
     
    1.  PCR擴增產(chǎn)物污染
     
    這是PCR反應(yīng)中最主要常見的污染問題,所以,擴增區(qū)的儀器什么如槍頭等要注意。 還有一種容易忽視,最可能造成PCR產(chǎn)物污染的形式是氣溶膠污染;在空氣與液體面摩擦?xí)r就可形成氣溶膠,在操作時比較劇烈地?fù)u動反應(yīng)管,開蓋時、吸樣時及污染進樣槍的反復(fù)吸樣都可形成氣溶膠而污染.據(jù)計算一個氣溶膠顆粒可含48000拷貝,因而由其造成的污染是一個值得特別重視的問題。
     
    1)標(biāo)本處理區(qū),包括擴增摸板的制備;
     
    2)PCR擴增區(qū),包括反應(yīng)液的配制和PCR擴增;
     
    3)產(chǎn)物分析區(qū),凝膠電泳分析,產(chǎn)物拍照及重組克隆的制備。
     
    各工作區(qū)要有一定的隔離,操作器材專用,要有一定的方向性。如:標(biāo)本制備→PCR擴增→產(chǎn)物分析→產(chǎn)物處理。 切記:產(chǎn)物分析區(qū)的產(chǎn)物及器材不要拿到其他兩個工作區(qū)。 使用一次性吸頭,嚴(yán)禁與PCR產(chǎn)物分析室的吸頭混用,吸頭不要長時間暴露于空氣中,避免氣溶膠的污染; 操作多份樣品時,制備反應(yīng)混合液,先將dNTP、緩沖液、引物和酶混合好,然后分裝,這樣即可以減少操作,避免污染,又可以增加反應(yīng)的精確度。
     
    2.  反應(yīng)液污染 可采用下列方法之一處理:
     
    1)DNase I法:PCR混合液(未加模板和Taq聚合酶)加入0.5 U DNase I,室溫反應(yīng)30 min后加熱滅活,然后加入模板和Taq聚合酶進行正常PCR擴增。該方法的優(yōu)點是不需要知道污染DNA的序列;
     
    2)尿嘧啶糖苷酶(UNG)法 由于UV照射的去污染作用對500 bp以下的片段效果不好,而臨床用于檢測的PCR擴增片段通常為300 bp左右,因此UNG的預(yù)防作用日益受到重視和肯定。
     
    a、提取mRNA時所用的EP管、玻璃等器皿全部都要用0.1%DEPC水浸泡。然后烘干,高壓滅菌,再烘干。
     
    b、用DEPC水洗過后當(dāng)然不能用雙蒸水洗了。那你用DEPC處理還有什么意義呢?還要用雙蒸水洗嗎?
     
    c、玻璃器皿干烤:180度,8小時或更長時間;小器皿也可以用少許氯仿處理一下。另外,鐵制品、研砵等也可倒上酒精直接燒。
     
    RNA提取
     
    一、RNA提取前的準(zhǔn)備
     
    1.  研缽的處理
     
    1) 自來水反復(fù)沖洗;
     
    2) 去污劑或者洗滌靈沖洗;
     
    3) 自來水反復(fù)沖洗;
     
    4) 蒸餾水浸泡1~2d;
     
    5) 超凈工作臺內(nèi)用無水乙醇沖洗2~3遍,晾干。(在RNA提取前,紫外殺菌10min)
     
    2.  槍頭及EP管的處理
     
    1) 0.1%DEPC水浸泡1~2w;
     
    2) 用鑷子夾起槍頭一一裝入槍頭盒中,用鑷子夾起EP管放入飯盒中;
     
    3) 高壓滅菌50min,45度烘箱烘干。
     
    二、RNA的提取
     
    Trizol法適用于人類、動物、植物、微生物的組織或培養(yǎng)細(xì)菌,樣品量從幾十毫克至幾克。用Trizol法提取的總RNA*蛋白和DNA污染。 RNA可直接用于Northern斑點分析,斑點雜交, Poly(A)+分離,體外翻譯,RNase封阻分析和分子克隆。
     
    在收集到生物材料之后,最好能即刻進行RNA制備工作。若需暫時儲存,則應(yīng)以液氮將生物材料急速冷凍后,儲存于-80 ℃冷凍柜。在制備RNA時,將儲存于冷凍柜的材料取出,立即以加入液氮研磨的方式打破細(xì)胞,不可以先行解凍,以避免RNase的作用。
     
    1.  將組織在液N中磨成粉末后,再以50-100 mg組織加入1 ml Trizol液研磨,注意樣品總體積不能超過所用Trizol體積的10%;提取細(xì)胞RNA時,先離心沉淀細(xì)胞,每5-10×106個細(xì)胞加1 ml Trizol后,反復(fù)用槍吹打或劇烈振蕩以裂解細(xì)胞;
     
    2.  將上述組織或細(xì)胞的Trizol裂解液轉(zhuǎn)入EP管中,在室溫15~30 ℃下放置5分鐘;然后以每1 mlTrizol液加入0.2 ml的比例加入氯仿,蓋緊離心管,用手劇烈搖蕩離心管15秒。 在室溫下(15 ℃~30 ℃)放置2~3分鐘后,12000 g(2 ℃~8 ℃)離心15分鐘;
     
    3.  取上層水相(離心后,混合物將分離為底層為淺紅的、中層為酚-氯仿相、上層為無色的水相。RNA包含在水相中,水相的體積約相當(dāng)于所加的Trizol試劑量的60%)于一新的離心管,按每1 mlTrizol液加0.5 ml異丙醇的比例加入異丙醇,室溫(15 ℃~30 ℃)放置10分鐘,12000 g(2 ℃~8 ℃)離心10分鐘。
     
    4.  棄去上清液(RNA沉淀為一層如凝膠樣透明的小塊附在管底和管壁),按每1 ml Trizol液加入至少1 ml的比例加入75%乙醇進行洗滌,渦旋混勻,4 ℃下7500 g離心5分鐘。
     
    5.  小心棄去上清液,讓沉淀的RNA在室溫下自然干燥或真空干燥5-10分鐘,注意不要干燥過分,否則會降低RNA的溶解度。
     
    6.  加適量Rnase-free water 溶解RNA沉淀(60 ℃ 10 min)。-70 ℃保存?zhèn)溆谩?/div> 
    7.  RNA可進行mRNA分離,或貯存于70%乙醇并保存于-70 ℃。
     
    [注意]
     
    1.  整個操作要帶口罩及一次性手套,并盡可能在低溫下操作。另外,提取上清這步一定要小心,靠近沉淀的部分一定要舍得不要,要不然會有蛋白質(zhì)污染,影響比值。
     
    2.  加氯仿前的勻漿液可在-70 ℃保存一個月以上,RNA沉淀在70%乙醇中可在4 ℃保存一周,-20 ℃保存一年。
     
    在實驗過程中要防止RNA的降解,保持RNA的完整性。在總RNA提取過程中注意避免mRNA 的斷裂;取2 ug進行RNA檢測,如果存在DNA污染時,要用DNase I進行消化(因為在處理過程中RNA極易降解,建議體系中加入適量RNA酶抑制劑。

     

    注意事項

     

    北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院阜外心血管病醫(yī)院心外科心血管病國家重點實驗室吳益和分享
     
    實驗中必須堅持的一些好習(xí)慣
     
    1. 加入試劑之前,把它混勻一下,以免放置時間長了濃度不均。
     
    2. 移液槍用完之后要歸到最大計量的位置,防止久而久之彈簧失去彈性。
     
    3. 所有的試劑都自己配,出了問題才好找原因一. 防止RNA酶污染的措施。
     
    一、防止RNA酶污染的措施
     
    1. 所有的玻璃器皿均應(yīng)在使用前于180 ℃的高溫下干烤6 h或更長時間。
     
    2. 塑料器皿可用0.1% DEPC水浸泡或用氯仿沖洗(注意:有機玻璃器具因可被氯仿腐蝕,故不能使用)。
     
    3. 有機玻璃的電泳槽等,可先用去污劑洗滌,雙蒸水沖洗,乙醇干燥,再浸泡在3% H2O2 室溫10 min,然后用0.1% DEPC水沖洗,晾干。
     
    4. 配制的溶液應(yīng)盡可能的用0.1% DEPC,在37 ℃處理12 h以上。然后用高壓滅菌除去殘留的DEPC。不能高壓滅菌的試劑,應(yīng)當(dāng)用DEPC處理過的無菌雙蒸水配制,然后經(jīng)0.22 μm濾膜過濾除菌。
     
    5. 操作人員戴一次性口罩. 帽子. 手套,實驗過程中手套要勤換。
     
    6. 設(shè)置RNA操作專用實驗室,所有器械等應(yīng)為專用。
     
    動植物總RNA提取-Trizol法
     
    Trizol法適用于人類. 動物. 植物. 微生物的組織或培養(yǎng)細(xì)菌,樣品量從幾十毫克至幾克。用Trizol法提取的總RNA*蛋白和DNA污染。 RNA可直接用于Northern斑點分析,斑點雜交, Poly(A)+分離,體外翻譯,RNase封阻分析和分子克隆。
     
    在收集到生物材料之后,最好能即刻進行RNA制備工作。若需暫時儲存,則應(yīng)以液氮將生物材料急速冷凍后,儲存于-80 ℃冷凍柜。在制備RNA時,將儲存于冷凍柜的材料取出,立即以加入液氮研磨的方式打破細(xì)胞,不可以先行解凍,以避免RNase的作用。
     
    1. 將組織在液N中磨成粉末后,再以50-100 mg組織加入1 ml Trizol液研磨,注意樣品總體積不能超過所用Trizol體積的10%;提取細(xì)胞RNA時,先離心沉淀細(xì)胞,每5-10×106個細(xì)胞加1 ml Trizol后,反復(fù)用槍吹打或劇烈振蕩以裂解細(xì)胞; 2. 將上述組織或細(xì)胞的Trizol裂解液轉(zhuǎn)入EP管中,在室溫15~30 ℃下放置5分鐘;然后以每1 mlTrizol液加入0.2 ml的比例加入氯仿,蓋緊離心管,用手劇烈搖蕩離心管15秒。 在室溫下(15 ℃~30 ℃)放置2~3分鐘后,12 000 g(2 ℃~8 ℃)離心15分鐘; 3. 取上層水相(離心后,混合物將分離為底層為淺紅的. 中層為酚-氯仿相. 上層為無色的水相。RNA包含在水相中,水相的體積約相當(dāng)于所加的Trizol試劑量的60%)于一新的離心管,按每1 mlTrizol液加0.5 ml異丙醇的比例加入異丙醇,室溫(15 ℃~30 ℃)放置10分鐘,12 000 g(2 ℃~8 ℃)離心10分鐘。【如果希望分離DNA或蛋白質(zhì),保留中層和下層酚-氯仿相,有機相能保存在4°C一夜】
     
    4. 棄去上清液(RNA沉淀為一層如凝膠樣透明的小塊附在管底和管壁),按每1 ml Trizol液加入至少1 ml的比例加入75%乙醇進行洗滌,渦旋混勻,4 ℃下7 500 g離心5分鐘【RNA能夠在-20 °C保存在75%乙醇中至少1年,4°C保存至少1周】
     
    5. 小心棄去上清液,讓沉淀的RNA在室溫下自然干燥或真空干燥5-10分鐘,注意不要干燥過分,否則會使RNA失去溶解性,導(dǎo)致A260/280 ratio <1.6。
     
    6. 加適量Rnase-free water 溶解RNA沉淀,用槍頭反復(fù)吸取混勻,55-60 ℃水浴10-15 min。進行下游實驗或-70 ℃保存?zhèn)溆谩?/div> 
    7. RNA可進行mRNA分離,或貯存于70%乙醇并保存于-70 ℃。
     
    預(yù)計的總RNA產(chǎn)量:
     
    [注意]
     
    1. 整個操作要帶口罩及一次性手套,并盡可能在低溫下操作。另外,提取上清這步一定要小心,靠近沉淀的部分一定要舍得不要,要不然會有蛋白質(zhì)污染,影響比值 2. 加氯仿前的勻漿液可在-70 ℃保存一個月以上,RNA沉淀在70%乙醇中可在4 ℃保存一周,-20 ℃保存一年。

     

     

    同實驗其他方法

    實時熒光定量PCR技術(shù)

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